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一、背景高
1.樣本中有不溶蛋白殘留,離心后應(yīng)立即取出上清。
2.洗滌不充分,優(yōu)化洗滌緩沖液,通過(guò)向洗滌緩沖液中加入去垢劑(0.5-1%NP-40/Triton X-100/Tween-20)、增加鹽離子濃度(如250mM NaCl/1-2mM DTT/β-ME),增加洗滌時(shí)間和次數(shù)來(lái)提高洗雜效率。
3.有非特異蛋白和磁珠結(jié)合,磁珠用BSA預(yù)封閉不充分,確保BSA新鮮,將磁珠和1%BSA 孵育1小時(shí),使用前PBS洗滌3-4次。
4.抗體特異性不好,使用親和純化,特異性好的抗體。
5.抗體用量太多導(dǎo)致非特異結(jié)合,嘗試使用更少的抗體。
6.裂解液中蛋白含量太高,導(dǎo)致洗滌液有很多假陽(yáng)性蛋白,減少樣本用量。
7.蛋白和抗體非特異結(jié)合,可以在免疫沉淀之前預(yù)先將磁珠和樣本孵育,清理樣本中可以和磁珠結(jié)合的成分,一些研究人員也使用同型對(duì)照來(lái)預(yù)清理裂解液。
8.樣本中目的蛋白降解,樣本裂解時(shí)嚴(yán)格低溫操作,加入過(guò)量蛋白酶抑制劑。
9.高強(qiáng)度洗脫緩沖液(如SDS-PAGE上樣緩沖液)將導(dǎo)致多種非特異蛋白和抗原一起洗脫,溫和的緩沖液(如0.1M甘氨酸,pH2.5)可防止此類(lèi)污染。
二、大量抗體被洗脫
抗體用量太高,嘗試減少抗體用量。
三、沒(méi)有檢測(cè)到目的蛋白洗脫
1.樣本中目的蛋白不表達(dá)或低水平表達(dá),如果表達(dá)水平低,需要增加裂解液用量,但也可能導(dǎo)致非特異結(jié)合的增加,所以在免疫沉淀之前需要預(yù)先清除裂解液。
2.抗體用量不夠,檢查抗體用量,提高使用量。
3.目標(biāo)蛋白沒(méi)有從磁珠上洗脫,需要確保使用的洗脫緩沖液正確。
4.抗體沒(méi)有結(jié)合磁珠,確保使用的磁珠和抗體亞型匹配,磁珠正確保存,防止變質(zhì)或干燥。
5.裂解液中鹽堿度太高,需要改用低鹽堿度裂解液。一般可選NP-40,RIPA, western及IP細(xì)胞裂解液。
四、加樣順序?qū)Π械鞍椎寐实挠绊?/strong>
磁珠、抗體、抗原樣本混合一起孵育,速度最快,但靶蛋白純度和得率會(huì)很低。
間接法是抗體和抗原樣本先結(jié)合,再加入磁珠孵育,靶蛋白得率最高,直接法是磁珠先和抗體結(jié)合,再加入抗原孵育,對(duì)于表達(dá)豐度高的蛋白,兩種方法差別不大,如果表達(dá)豐度低,要選擇間接法獲得更高的靶蛋白得率。
五、抗原洗脫方法的選擇
2.酸性洗脫法:如果要對(duì)洗脫后蛋白進(jìn)行功能分析,則用酸性洗脫法,0.1M-0.15甘氨酸(pH2.5-3)是最高效的非變性洗脫液。
3.競(jìng)爭(zhēng)洗脫法:如果靶蛋白帶有標(biāo)簽,可用高濃度標(biāo)簽或配體進(jìn)行競(jìng)爭(zhēng)性洗脫,洗脫后樣本具有生物活性,且沒(méi)有抗原片段污染。
陰性對(duì)照:如用同型對(duì)照作為陰性對(duì)照,來(lái)排除非特異結(jié)合的情況。
七、二抗如何選擇
IP捕獲抗體 | WB檢測(cè)一抗 | WB檢測(cè)二抗 | 備注 |
小鼠來(lái)源 | 小鼠來(lái)源 | HRP-protein A 或HRP-抗小鼠IgG | WB一抗若為mouse lgG1/lgG3亞型,HRP-標(biāo)記 ProteinA親和力較低,可適當(dāng)降低其稀釋度(也可先嘗試HRP-抗小鼠lgG二抗); WB一抗若為小鼠 lgM/lgA亞型,則避免選擇HRP- ProteinA,因其不結(jié)合。 |
兔來(lái)源 | HRP-抗兔IgG | ||
兔來(lái)源 | 小鼠來(lái)源 | HRP-抗小鼠IgG | |
兔來(lái)源 | HRP-protein A或HRP-抗兔IgG輕鏈特異性抗體 | HRP-Protein A可以有效降低重鏈信號(hào)以及消減輕鏈信號(hào)的影響,背景干凈,適用于檢測(cè)目的蛋白大小除45-55kDa之外的所有目的蛋白,而目的蛋白大小在45-55kDa之間時(shí),推薦使用HRP-標(biāo)記抗兔lgG輕鏈特異性二抗。 |